Introducción
⌅La
acuicultura en Cuba representa una fuente de ingresos económicos debido
a que muchos productos se destinan para la exportación y la
alimentación de la población. Los cultivos se ven afectados
frecuentemente por diferentes enfermedades de origen bacteriano
provocadas en su mayoría por especies del género Vibrio, reduce
el potencial productivo y en algunas ocasiones llega a causar daños
significativos que conducen a la pérdida parcial o total de las cosechas
en las granjas donde se tiene una alta densidad de población (11. FAO. Fishery statistical collections: global production. Rome: Food and Agriculture Organization of the United Nations; 2018.
, 22.
León Quispe J. Aislamiento, caracterización y actividad antibiótica de
actinomicetos marinos frente a patógenos multi-drogo-resistentes de
origen clínico. 2024.Tesis doctoral. Universidad Nacional Mayor de San
Marcos. Perú. https://hdl.handle.net/20.500.12672/21923.
, 33. Cámara Nacional de Acuacultura. Estadísticas. Guayaquil, Ecuador (EC): Cámara Nacional de Acuacultura; 2020.
).
Esto
ha hecho que, el tratamiento y prevención de las enfermedades en
animales acuáticos se realice mediante el empleo de diferentes tipos de
antibióticos (44.
Gracia-Valenzuela MH, Márquez-Castillo A, Leyva JM, Ortega-Ramírez LA,
Cardoso-Antonio JO, Sital-Gastelum MI, Galindo-Félix J I,
Gutiérrez-Pacheco MM. Resistencia a antibióticos de vibrios aislados
durante el cultivo de camarón blanco (Litopenaeus vannamei). Revista Latinoamericana De Recursos Naturales. 2024; 20 (2): 34-39, Recuperado a partir de: https://revista.itson.edu.mx/index.php/rlrn/article/view/343
). No obstante, estos se aplican a menudo de
manera inadecuada, sin hacer un análisis de sensibilidad antibiótica, en
dosis excesivas y a veces, como método preventivo, lo que propicia el
desarrollo de resistencia bacteriana (55.
Alarcón Rojas MG, Acevedo Parada JN, Corredor Rodríguez Y, Sierra
Quintero D. A. El uso inadecuado de antibióticos ha generado resistencia
bacteriana, un problema de salud pública que pone en riesgo la eficacia
de los tratamientos médicos actuales y futuros: una revisión temática.
Diplomado de profundización en farmacovigilancia. Escuela ciencias de la
Salud ECISA. Universidad Nacional Abierta a Distancia UNAD. [Internet].
2025. [citado: 2026, enero] Disponible en: https://repository.unad.edu.co/handle/10596/77110.
, 66. Jara-Medina NR, Cedeño-Pinargote AC, Beltrán-Noboa A, Tejera E, Machado A. Managing Vibrio parahaemolyticus and Vibrio alginolyticus Infections in the Whiteleg Shrimp (Penaeus vannamei): A Systematic Review. Molecules. 2025; 30 (17): 3620. http://doi.org/10.3390/molecules30173620.
, 77.
Varela A, Choc-Martínez LF. Técnicas diagnósticas para enfermedades
bacterianas en camarones. Rev Investig Vet Perú. 2020; 31:e18165. http://doi.org/10.15381/rivep.v31i3.18165
).
Según Solano et al. (88.
Solano Escalante YP, Cárdenas Ortega JL. Mecanismos fenotípicos de
resistencia a antibióticos de bacterias endosimbióticas de amebas de
vida libre aisladas de agua de consumo de la Ciudad de Cúcuta,
Universidad de Santander “UDES”. Tesis. 2019.
), la
resistencia antimicrobiana es la capacidad natural o adquirida de una
bacteria de no presentar sensibilidad ante los efectos bactericidas de
un antibiótico dado. Las bacterias desarrollan estos mecanismos debido a
su gran capacidad de adaptación. Esta habilidad se debe a sus cortos
ciclos de vida, su alta frecuencia de mutación y la posibilidad de
transferir genes de resistencia entre ellas (99. Cañarte Castro CC, Muñiz Pincay MJ. Infección de transmisión sexual por Neisseria gonorrhoeae:
epidemiología y mecanismos de resistencia antimicrobiana en América del
Sur. Tesis Licenciatura. Jipijapa, Manabi, Ecuador. Facultad de
Ciencias de la Salud. 2023.
, 1010.
Murray CJ, Ikuta KS, Sharara F, Swetschinski L, Aguilar GR, Gray A,
Tasak N. Global burden of bacterial antimicrobial resistance in 2019: a
systematic analysis. The lancet.2022; 399 (10325): 629-655.
), por lo que es usual que una misma bacteria desarrolle diversos mecanismos de resistencia frente a uno o más antibióticos (1111.
Mantilla Becerra YN. Microorganismos multirresistentes a antibióticos:
mecanismos y alternativas al tratamiento convencional. Trabajo de fin de
curso. Facultad de medicina. Universidad de Cantabria. Santander, Junio
2020.
).
Según estudios reportados por diferentes autores (66. Jara-Medina NR, Cedeño-Pinargote AC, Beltrán-Noboa A, Tejera E, Machado A. Managing Vibrio parahaemolyticus and Vibrio alginolyticus Infections in the Whiteleg Shrimp (Penaeus vannamei): A Systematic Review. Molecules. 2025; 30 (17): 3620. http://doi.org/10.3390/molecules30173620.
, 1414.
Rodríguez Tamayo E, Jiménez Quiceno J. Resistencia bacteriana a
antibióticos en ambientes acuáticos: origen e implicaciones para la
salud pública. Medellín, Colombia: Universidad de Antioquia, Facultad
Nacional de Salud Pública. 2023;41(3): e351453. https://doi.org/10.17533/udea.rfnsp.e351453.
, 1515.
Huamán Iturrizaga M, Salvador-Luján G, Morales L, Alba Luna J,
Velasquez Garcia JL, Pacheco Pérez D, Pons M J. Resistencia a
cefalosporinas y quinolonas en Escherichia coli aisladas de agua de
riego del río Rímac en Lima este, Perú. Rev Peru Med Exp Salud Publica.
2024;41(2):114-20. http://doi.org/10.17843/rpmesp.2024.412.13246.
)
el surgimiento de resistencia para uno o varios antibióticos en
numerosas cepas patógenas en la acuicultura es un asunto preocupante,
reportándose múltiples casos a nivel mundial desde Malasia e India (1212.
Natrah I, Muthukrishnan S, Mohd‐Padil H, Mohamad N, Alipiah NM, Shariff
M, Defoirdt T. Antimicrobial resistance in Malaysian shrimp aquaculture
and strategies to reduce its occurrence. Reviews in Aquaculture. 2025; 17(3): e70020. https://doi.org/10.1111/raq.70020
, 1313.
Sivaraman, G. K., Vijayan, A., Rajan, V., Elangovan, R., Prendivillie,
A., & Bachmann, T. (2022). Impactof antimicrobial use and antibiotic
resistant pathogens in aquatic products-An Indian perspective. Indian
J. Anim. Health, 61(1), 14-22. 2022. https://doi.org/10.36062/ijah.2022.14821
), hasta Latinoamérica en Brasil, Perú y Ecuador.
La eficacia de los tratamientos antibióticos se ve progresivamente
reducida, lo que constituye un riesgo tanto para el ambiente como para
la salud humana. Este fenómeno se debe a que las cepas bacterianas
resistentes, presentes en animales, pueden transmitirse al ser humano
mediante el consumo de estos, y transferir sus genes de resistencia a
cepas patógenas relevantes para la salud humana (66. Jara-Medina NR, Cedeño-Pinargote AC, Beltrán-Noboa A, Tejera E, Machado A. Managing Vibrio parahaemolyticus and Vibrio alginolyticus Infections in the Whiteleg Shrimp (Penaeus vannamei): A Systematic Review. Molecules. 2025; 30 (17): 3620. http://doi.org/10.3390/molecules30173620.
, 1616.
Ruiz de Galarreta Beristain M. La resistencia a los antibióticos, un
problema de salud global: las infecciones por microbacterias
ultrarresistentes. 2021.
, 1717.
Torras M de los Ángeles Calvo. Reflexiones sobre la resistencia
bacteriana a los antibióticos. Implicaciones en salud humana y animal.
Anales de la Real Academia de Doctores. Vol. 6. No. 3. Real Academia de
Doctores de España, 2021.
).
En este contexto, y dada la relevancia que la resistencia antimicrobiana representa tanto para la salud animal como humana, se planteó como objetivo de este estudio determinar los perfiles de resistencia antimicrobiana en diferentes aislados de especies del género Vibrio provenientes de cultivos acuáticos y camarones procesados en la industria.
Materiales y Métodos
⌅Aislados microbianos
⌅Se obtuvieron 45 aislados de diferentes especies de Vibrio, procedentes de cultivos acuáticos, 39 de camarón blanco (L. vannamei) y cuatro de angulas los cuales fueron obtenidos por el laboratorio de Diagnóstico de Enfermedades Bacterianas; y tres de camarones procesados en la industria por el laboratorio de Microbiología de los Alimentos, ambos del Centro de Investigaciones Pesqueras de Cuba.
Análisis Microbiológicos
⌅Se
realizó la extracción asépticamente de hepatopáncreas de los camarones
de cultivo, mientras que las angulas fueron lavadas, cortadas y
maceradas en un mortero estéril. Tanto los hepatopáncreas como las
angulas fueron transferidos a tubos de ensayo con 5 mL de caldo Triptona
soya al 3% de NaCl para obtener los homogenados. Posteriormente, se
hicieron diluciones decimales seriadas (10-1-10-3)
para la obtención entre 30 y 300 colonias. Se inocularon 0.1 mL de
muestra en placas Petri con los medios de cultivo agar Tiosulfato
Citrato Sales Bilis Sacarosa (TCBS) y Agar Triptona Soya suplementado
con cloruro de sodio (TSA 3%), según procedimiento descrito por Rubio et. al (1818.
Rubio M, Silveira R, Hernández DA, Pérez A, Pozo M. Prevalencia de
enfermedades en el camarón de cultivo L. vannamei en Cuba. Revista
Cubana de Investigaciones Pesqueras. 2020; 37(2): 57-65. ISSN 0138-8452. http://hdl.handle.net/1834/41620.
).
Se trasladaron a la incubadora por 24 h a 30oC y, posteriormente, las
colonias seleccionadas se aislaron en tubos inclinados de Agar Triptona
Soya suplementado al 3% con NaCl e incubaron durante 24-48 h. La
caracterización de las cepas se hizo por pruebas bioquímicas, que
permitieron su identificación taxonómica (1818.
Rubio M, Silveira R, Hernández DA, Pérez A, Pozo M. Prevalencia de
enfermedades en el camarón de cultivo L. vannamei en Cuba. Revista
Cubana de Investigaciones Pesqueras. 2020; 37(2): 57-65. ISSN 0138-8452. http://hdl.handle.net/1834/41620.
, 1919. Buller NB. Bacteria from fish and other aquatic animals: a practical identification manual. London: CABI Publishing; 2015.
). Los cinco aislados de productos pesqueros fueron obtenidos usando la metodología descrita en la norma ISO (2020. ISO. Microbiology of the food chain - Horizontal method for detection of potentially enteropathogenic Vibrio spp. ISO 21872-1:2017. Geneva: International Organization for Standardization; 2017.
).
Selección de los antibióticos a usar frente a especies del género Vibrio
⌅Se
seleccionaron discos de antibióticos para antibiograma de: T
(tetraciclina, 30µg), SXT (sulfametoxazol/trimetropam, 25µg), C
(cloranfenicol, 30µg), No (novobiocina, 5µg), AMP (ampicilina, 10µg), E
(eritromicina, 30µg), de acuerdo con la clasificación establecida por el
Comité Europeo para las Pruebas de Sensibilidad a los Antimicrobianos (2121. EUCAST. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters. Version 12.0. 2021. Available from: https://www.eucast.org
, 2222. EUCAST. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters. Version 12.0. 2022. Available from: https://www.eucast.org
),
referida al nivel de importancia de los antimicrobianos para la salud
animal y humana, tal como se detalla en las tablas correspondientes a
cada año analizado.
Determinación de susceptibilidad antimicrobiana de especies de Vibrio spp
⌅Las cepas de Vibrio spp. a evaluar se sembraron por agotamiento en placas de Agar Triptona
Soya con sal y se incubaron a 30˚C por 18 horas. Posteriormente, se
transfirieron cinco colonias de cada una de las placas con medio TSA 3%
con ayuda del asa a tubos con 5mL de caldo Mueller-Hinton, para igualar
la densidad de ese tubo previamente inoculado con el tubo número cinco
de la escala del nefelómetro de Mc Farland correspondiente a 108 UFC/mL y fueron incubados por 24 horas a 30˚C. Una vez listo el inóculo
se procedió a realizar antibiogramas que determinaron la sensibilidad
de las cepas de interés (2323.
Smaldone G, Marrone R, Cappiello S, Martin GA, Oliva G, Cortesi ML,
Anastasio A. Occurrence of antibiotic resistance in bacteria isolated
from seawater organisms caught in Campania Region: preliminary study.
BMC Vet Res. 2014; 10: 161.
).
Se realizó el
método de siembra masiva con hisopo en las placas que contenían agar
Mueller Hinton. Una vez secas, se depositaron los discos impregnados con
el antimicrobiano con pinzas estériles. Tras depositar los discos en la
placa se mantuvieron en reposo durante 5 minutos, finalmente se
incubaron en posición invertida durante 24 horas a 30oC para el adecuado crecimiento microbiano (2424.
Pérez Esteve E, Rivas Soler A. Determinación de la sensibilidad de los
microorganismos frente a antimicrobianos de origen natural y la
concentración mínima inhibitoria por métodos fenotípicos. Universidad
Politécnica de Valencia. España. 2021. Disponible en: https://riunet.upv.es/handle/10251/167611.
).
Una
vez transcurrido el tiempo de incubación, se midieron los halos de
inhibición de cada antibiótico en mm, los cuales fueron evaluados como
resistente (R), Intermedio (I) y sensible (S) según los criterios de
EUCAST en los años 2021 y 2022 respectivamente (2121. EUCAST. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters. Version 12.0. 2021. Available from: https://www.eucast.org
, 2222. EUCAST. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters. Version 12.0. 2022. Available from: https://www.eucast.org
).
Se analizó el promedio de patrones de susceptibilidad antimicrobiana de cepas del género Vibrio frente a los seis antimicrobianos empleados por periodos y la tendencia lineal.
Resultados
⌅Las especies identificadas fueron Vibrio parahaemolyticus, V. diazotrophicus, Vibrio natriegiens, Vibrio mimicus,Vibrio splendidus, Vibrio ordalli, Vibrio vulnificus, Vibrio campbelli, Vibrio alginolyticus.
Los resultados de los antibiogramas realizados se muestran en las siguientes figuras:
En Vibrio spp. hubo 100% de resistencia a novobiocina y ampicilina. El 60% de las cepas mostró resistencia a tetraciclina. El 40% tuvo resistencia a eritromicina y no hubo resistencia para el sulfometaxazol- trimetropin y cloranfenicol (Figura 1).
El 36 % de las cepas ensayadas presentaron resistencia al cloranfenicol, tetraciclina sulfametoxazol- trimetropin; el 63% fue resistente a la eritromicina y el 100% a la ampicilina en el segundo semestre del 2021 (Figura 2).
El 71% de los aislados es resistente al cloranfenicol, el 57% a la novobiocina, el 43% a la sulfametoxazol-trimetropin, el 29% a la tetraciclina, lo cual es favorable para el tratamiento de las septicemias bacterianas. Todos los aislados presentaron 100% de resistencia a eritromicina y a ampicilina.
El 58% de las cepas del género Vibrio evaluadas fueron resistentes al cloranfenicol, como muestra la Figura 3. El 71% fue resistente a la ampicilina, el 29% a Sulfametoxazol-trimetropin, el 33% a la tetraciclina, el 38% a la eritromicina y el 42% a la novobiocina. Este resultado indica que a los antibióticos de importancia crítica (Sulfametoxazol-trimetropin y tetraciclina) presentaron una resistencia menor del 50%, lo cual es favorable para su uso en tratamientos de enfermedades.
Varias cepas del género Vibrio se comportan como multirresistentes, por tener tres o más antibióticos que no inhibieron el crecimiento bacteriano. Entre ellas Vibrio natriegens, V. diazotrophicus y V. ordalli. De ellos, el único que se reporta como patógeno es V. ordalli; los otros se consideran ambientales que pueden considerarse reservorios de genes de resistencia en el ambiente acuático.
Vibrio parahaemolyticus y V. splendidus también muestran resistencia y si constituyen patógenos de importancia en el cultivo de camarón y como patógeno de humanos.
Los resultados de la Figura 4 muestran que, de un total de 24 cepas de Vibrio ensayadas, 14 mostraron resistencia al menos al 50% de los antibióticos ensayados. Hay una cepa con 100% de resistencia (Vibrio diazotrophicus 203), 5 cepas con 83% (Vibrio vulnificus 586, Vibrio natriegens 572, Vibrio alginolyticus 202, Vibrio ordalli 233, Vibrio parahaemolyticus 259), 5 cepas con 67% (Vibrio natriegens 244, Vibrio mimicus 188, Vibrio natriegens 480, Vibrio alginolyticus 587, Vibrio diazotrophicus 763) y con 50% (Vibrio natriegens 367).
En el año 2021, los aislados del género Vibrio mostraron mayor resistencia a los antibióticos: ampicillina, eritromicina y novobiocina; mientras que en 2022 lo hicieron a la ampicillina, cloranfenicol, eritromicina y novobiocina.
El mayor número de aislados (2424.
Pérez Esteve E, Rivas Soler A. Determinación de la sensibilidad de los
microorganismos frente a antimicrobianos de origen natural y la
concentración mínima inhibitoria por métodos fenotípicos. Universidad
Politécnica de Valencia. España. 2021. Disponible en: https://riunet.upv.es/handle/10251/167611.
)
se obtuvo durante la época de lluvia, mientras que los 21 restantes
fueron aislados en época de seca. En esta primera época, tres aislados
tuvieron la capacidad de resistencia frente a tres antibióticos
clasificándolos como multirresistentes, mientras que ocho mostraron ser
resistentes a más de tres, clasificándose como resistencia extrema. En
la época de estiaje se incrementó en 11 el número de aislados con
resistencia extrema y disminuyó en tres la multirresistencia.
El análisis de la tendencia de los promedios de cada antibiótico durante los cuatro periodos analizados mostró una disminución de la sensibilidad en el cloranfenicol, eritromicina y sulfametxasol-trimetropin en los tres últimos periodos analizados, mientras que la ampicilina se mantuvo resistente durante todos los periodos. Por otro lado, la novobiocina alcanzó los mayores valores de resistencia durante el tercer periodo, y la tetraciclina tuvo menor resistencia durante el segundo periodo del 2021. Esto se muestra en las Figuras 5, 6 y 7.
Discusión
⌅La resistencia antimicrobiana en bacterias del género Vibrio presentes en ambientes acuáticos está influida por factores ambientales
como la contaminación por residuos antibióticos y las condiciones
estacionales que favorecen la proliferación y transferencia de genes de
resistencia, lo que representa un riesgo significativo para la salud
pública y la acuicultura (2525. Reboucas ESN, Valério FAC, Mota ML, et al. Resistencia antibiótica en Vibrio spp aislados de camarón blanco. Rev.Peruana Biol. 2021;28(4):22-30.
).
Vibrio diazotrophicus es reconocido como una cepa ambiental no patógena para el camarón, con
alta capacidad de fijación de nitrógeno y tendencia a encontrarse en
ambientes con exceso de materia orgánica, actuando como reservorio de
genes de resistencia a antibióticos, lo que puede contribuir a la
diseminación de resistencia en ambientes acuáticos (2626. Sánchez Villanueva A. Identificación y cuantificación de Vibrio spp en camarón de río (Cryphios caementarius)
procedentes de Mercado pesquero Villa Maria del Triunfo. Tesis para
optar el Título Profesional de Médico Veterinario. Lima Perú. facultad
de ciencias biológicas. Escuela profesional de ciencias veterinarias.
Universidad Ricardo Palma. 2018. Disponible en: http://riul.unanleon.edu.ni:8080/jspui/bitstream/123456789/8172/245067.pdf
). Sin embargo, la literatura específica sobre la resistencia extrema de la cepa 203 de V. diazotrophicus es limitada, aunque se reconoce que bacterias ambientales pueden portar
y transferir genes de resistencia, incluso sin ser patógenas (2727.
Perron GG, Quessy S, Dickey J, Bell G. The Impact of Non-Pathogenic
Bacteria on the spread of virulence and antibiotic resistance genes.
Front Cell Infect Microbiol. 2023;13: 1084578. http://doi.org/10.3389/fcimb.2023.1084578.
).
En contraste, estudios sobre Vibrio natriegens muestran patrones variables de resistencia a antibióticos, con reportes
de porcentajes de resistencia del 83%, 67% y 50% a diferentes fármacos,
lo que indica una diversidad en los mecanismos y niveles de resistencia
dentro del género Vibrio (2727.
Perron GG, Quessy S, Dickey J, Bell G. The Impact of Non-Pathogenic
Bacteria on the spread of virulence and antibiotic resistance genes.
Front Cell Infect Microbiol. 2023;13: 1084578. http://doi.org/10.3389/fcimb.2023.1084578.
). Estos hallazgos coinciden con la idea de que las especies ambientales de Vibrio pueden presentar una amplia gama de perfiles de resistencia, aunque la
magnitud y los mecanismos pueden diferir entre especies y cepas.
Se corrobora que el género Vibrio presenta alta resistencia antimicrobiana a las penicilinas. Estos
resultados también fueron reportados en otras investigaciones con cepas
de V. cholerae de origen clínico y ambiental, así como en cepas ambientales de Vibrio en Perú (2828. Sulca MA, Orozco R, Alvarado DE. Antimicrobial resistance not related to 1, 2, 3 integrons and Superintegron in Vibrio spp. isolated from seawater sample of Lima (Perú). Mar Pollut Bull. 2018; 131:370-7. http://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2018.04.050.
, 2929.
Das B, Verma J, Kumar P, Ghosh A, Ramamurthy T. Antibiotic resistance
in Vibrio cholerae: Understanding the ecology of resistance genes and
mechanisms. Vaccine. 2020; 38: A83-92. http://doi.org/10.1016/j.vaccine.2019.06.031.
, 3030.
Garbern SC, Chu TC, Yang P, Gainey M, Nasrin S, Kanekar S, et al.
Clinical and socio-environmental determinants of multidrug-resistant Vibrio cholerae 01 in older children and adults in Bangladesh. Int J Infect Dis. 2021; 105:436-41. http://doi.org/10.1016/j.ijid.2021.02.102.
, 3131.
Gupta P, Modgil V, Kant V, Kaur H, Narayan C, Mahindroo J, et al.
Phenotypic and genotypic characterization of antimicrobial resistance in
clinical isolates of Vibrio cholerae over a decade (2002-2016). Indian J Med Microbiol. 2022; 40(1):24-9. http://doi.org/10.1016/j.ijmmb.2021.11.008.
, 3232. Ibarra-Trujillo Jimmy, Alvarado Débora, Gavilán Ronnie. Molecular characterization and antimicrobial resistance of Vibrio cholerae in Perú, 1991 - 2019. An. Fac. med. [Internet]. Abr [citado 2025 Dic 12]; 85 (2): 146-155. 2024. Disponible en: http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S102555832024000200005&lng=es. Epub 30-Jun-2024. http://dx.doi.org/10.15381/anales.v85i2.28433.
).
La novobiocina es un antibiótico clasificado de importancia según la OMSA (3333. OMSA. Código Sanitario para los Animales Acuáticos. París: Organización Mundial de Sanidad Animal; 2021.
), pero no ha sido declarado por normas internacionales para controlar infecciones causadas por Vibrio, su evaluación se realizó debido a que anteriormente, era utilizado para diferenciarlo de los géneros bacterianos Pleisiomonas y Aeromonas (3434.
Austin B. Bacterial Pathogens of Marine Fish. In: Belkin, S., Colwell,
R.R. (eds) Oceans and Health: Pathogens in the Marine Environment.
Springer, Boston, MA. 2005. https://doi.org/10.1007/0-387-23709-7_17
). Sin embargo, en el presente estudio se obtuvo
en la mayoría de los aislados resistencia a la novobiocina, lo cual
difiere de lo encontrado en otro estudio (3535. Konechnyi Y, Khorkavyi Y, Ivanchuk K, Kobza I, Sękowska A, Korniychuk O. Vibrio metschnikovii: current state of knowledge and discussion of recently identified clinical case. Clin Case Rep. 2021; 9(4):2236-44.
) que obtuvo cepas sensibles a este antimicrobiano.
La
aparición de resistencia a antibióticos en bacterias, además de ser un
problema biológico, es sin lugar a dudas un problema médico, social,
económico y ético dado que las infecciones producidas por estas
bacterias resistentes a los antibióticos tienen mayor morbilidad y
mortalidad (3636. Ruiz DRF, Enríquez MQ, Pérez OLC. Los antibióticos y su impacto en la sociedad. MediSur. 2021; 19(3):477-91.
).
El
tratamiento con antibióticos genera costos aumentados por la selección
de resistencia en la microbiota normal, y esta resistencia puede ser
transmitida a patógenos, aumentando la resistencia a estos antibióticos
utilizados. En la terapia antibiótica clínicamente adecuada, el
antibiótico selecciona bacterias resistentes en la microbiota normal del
individuo tratado y en su entorno (3737.
Anduni L. Efecto de la hospitalización en la adquisición de genes de
resistencia a antibióticos en la microbiota intestinal. Tesis para optar
por el título de master en Ciencias Biológicas. Santiago, Chile:
Universidad de Chile - Facultad de Ciencias; 2025. Disponible en: https://repositorio.uchile.cl/handle/2250/204317.
).
Las bacterias pueden adquirir resistencia mediante mutaciones o
transferencia de genes a través de plásmidos, elementos genéticos
móviles que facilitan la diseminación de la resistencia, incluso en la
microbiota intestinal de pacientes (3838.
Estrada-Calles, DM, Rodríguez-Gamboa MF, Velázquez-Álvarez EA.
Resistance to betalactam antimicrobials:current situation and new
strategies. RD-ICUAP, Año 8, No. 22, pp. 13 -27. 2022. https://doi.org/10.32399/icuap.rdic.2448-5829.2022.22.682.
). Este fenómeno incrementa la dificultad para tratar infecciones y representa una amenaza creciente para la salud pública (3939.
DelaFuente J, Diaz-Colunga J, Sanchez, A, San Millan A. Global
epistasis in plasmid-mediated antimicrobial resistance. Molecular
systems biology. 2024; 20(4), 311-320. https://doi.org/10.1038/s44320-024-00012-1.
).
En
la acuicultura cubana, no se emplean antibióticos debido a que las
enfermedades pueden ser controladas y prevenidas mediante la
implementación de buenas prácticas de cultivo, lo cual minimiza la
presión selectiva para el desarrollo de resistencia bacteriana (4040.
García-López J, Pérez M, Torres L. Uso y resistencia a antibióticos en
acuicultura: situación en Cuba. Rev Cubana de Acuacultura. 2019; 45 (1),
15-23.
). No obstante, se ha detectado resistencia en especies del género Vibrio que forman parte de la microbiota ambiental y de los animales cultivados. Según (4141. Codex Alimentarius. Alimentos producidos orgánicamente. 2.ª ed. Roma: FAO; 2024.
),
la oxitetraciclina es el único antibiótico autorizado para su uso en
animales acuáticos; aunque en Cuba no se ha utilizado en los últimos
cinco años, los resultados de este estudio evidencian resistencia a esta
sustancia por parte de diferentes especies patógenas y ambientales del
género Vibrio.
En el periodo de enero a junio de 2021 la
presencia de resistencia a la tetraciclina se aprecia tanto en aislados
de animales en cultivo como en producto pesquero listo para el consumo.
La especie Vibrio parahaemolyticus, es considerada como patógeno
oportunista de camarón tanto en la fase de larvicultura como en la de
engorde. Es reconocido como una de las especies más frecuentes. También
son muy frecuentes las especies V. alginolyticus, V. vulnificus, en la ceba; en cultivo larvario se reportan V. harveyi y V. splendidus (4242.
Zambrano Vera CJ. Aislamiento y caracterización de bacterias
responsables de enfermedades en el camarón Penaeus vannamei,
determinando su caracterización bioquímica y su respuesta a la
susceptibilidad a diferentes productos comerciales (Tesis de
Licenciatura para optar por el título de Biología). La Libertad:
Universidad Estatal Península de Santa Elena. Matriz. Facultad de
Ciencias del Mar. 74p. 2023.
). En este trabajo las
cepas aisladas en el período no manifiestan resistencia al
cloranfenicol, resultado que no coincide con lo planteado por Loo et al. (4343. Loo KY, Letchumanan V, Law JWF, Pusparajah P, Goh BH, Ab Mutalib NS, Lee LH. Incidence of antibiotic resistance in Vibrio spp. Rev Aquac. 2020; 12(4):2590-608.
).
Vibrio vulnificus se considera sensible a tetraciclina, cloranfenicol, penicilina, aminoglucósidos (amikacina, estreptomicina, gentamicina) (4444.
Dutta D, Kaushik A, Kumar D, Bag S. Foodborne pathogenic vibrios:
antimicrobial resistance. Front Microbiol. 2021; 12:638331.
),
en este trabajo se mantuvo resistente solo a la ampicilina, que es un
tipo de penicilina, al que todas las especies del género Vibrio tienen resistencia intrínseca.
Los
resultados evidencian una alta presencia de bacterias con resistencia a
múltiples antibióticos, con una mayor cantidad de aislados en época de
lluvia, donde se identificaron cepas multirresistentes y con resistencia
extrema. Este patrón coincide con investigaciones recientes que
muestran que ambientes acuáticos durante periodos húmedos tienden a
favorecer la proliferación y diseminación de bacterias resistentes
debido a la mayor presencia de contaminantes y condiciones ambientales
favorables para la transferencia genética horizontal de genes de
resistencia (4545. Fernández Abreu, A. "Vibrio cholerae en Cuba (1997-2019). Distribución temporo-espacial, potencial
patogénico y resistencia a los antimicrobianos." Tesis en opción al
grado científico de Doctora en Ciencias de la Salud. La Habana, Cuba.
2021.
, 4646.
Guillén-Ferraro M L, Cordovéz-Martínez MC, González-Romero AC,
Medina-Ramírez GE, Mur-Caicedo L, Marcillo-Valencia KG. Bacterias
multirresistentes en aguas de riego del río Chibunga, Chimborazo,
Ecuador. FIGEMPA: Investigación y Desarrollo. 2024; 17(1): 16-25. https://doi.org/10.29166/revfig.v17i1.5793.
).
Además, el incremento de bacterias con resistencia extrema en época
estiaje coincide con la hipótesis de fluctuación estacional en la
resistencia bacteriana, posiblemente atribuible a factores como la
concentración variable de antibióticos en el ambiente y el estrés
ambiental que selecciona cepas más resistentes (4747.
Medimay. Bacterias multirresistentes en ecosistemas aislados y su
impacto en salud pública. Rev. Cuba Med.2021; 60 (3):123-30.
, 4848.
Sassi A, Basher NS, Kirat H, Meradji S, Ibrahim NA, Idres T, Touati A.
The Role of the Environment (Water, Air, Soil) in the Emergence and
Dissemination of Antimicrobial Resistance: A One Health Perspective. Antibiotics. 2025; 14(8), 764. https://doi.org/10.3390/antibiotics14080764.
).
La presencia de organismos multirresistentes en estos ambientes es un
problema crítico de salud pública, pues limita las opciones terapéuticas
y aumenta los riesgos sanitarios, aspecto ampliamente reconocido en la
literatura actual (4949. Cohen ML. Epidemiology and the impact of antimicrobial resistance. J Antimicrob Chemother. 2022; 77(12):3281-3290.
).
Conclusión
⌅Los aislados de Vibrio spp. provenientes de cultivos acuáticos y camarones procesados en Cuba mostraron resistencia del 100 % a ampicilina y novobiocina, y altos niveles de multirresistencia, incluyendo especies zoonóticas (V. parahaemolyticus, V. vulnificus) y ambientales (V. diazotrophicus, V. natriegens). A pesar de la ausencia de uso reciente de antibióticos en la acuicultura cubana, la persistencia de resistencia, incluso a antimicrobianos de importancia crítica, subraya el rol de los ambientes acuáticos como reservorios de genes de resistencia. Los hallazgos refuerzan la necesidad de vigilancia continua y un enfoque integrado de “Una Salud” para mitigar riesgos a la salud pública y la seguridad alimentaria.
Agradecimientos al proyecto PS LH001-008: Comportamiento de la resistencia antimicrobiana en animales acuáticos en Cuba por el financiamiento de la investigación.