Introducción

El mango (Mangifera indica L.), originario del sureste asiático, se cultiva en más de 100 países, con una producción mundial que superó los 55 millones de toneladas en 2022 (11. FAO. FAOSTAT: Mango Production. Rome: FAO; 2023. Disponible en: http://data.apps.fao.org/catalog/dataset/crop-production-yield-harvested-area-global-national-annual-faostat Acceso: enero 2025.
). En Cuba, es un rubro con elevada aceptación en el mercado nacional, tanto fresco como procesado; es la fruta no cítrico más importante, representando el 33 % de la producción frutal no cítrica (22. Anaya B, García A. Cadena del mango en Santiago de Cuba: sondeo de demanda. Rev Econ Desarro. 2018;159(1):29-41.
). Existe cultura y tradición de su cultivo y es una de las que más se procesa industrialmente y de la que se obtiene una amplia gama de productos derivados. Contribuye a la sustitución de importaciones, pues el 28 % de la pulpa industrializada se utiliza para la producción de compotas. Aunque hoy se dirige, mayormente, al consumo doméstico, muestra perspectivas positivas para el abastecimiento del sector turístico y la exportación (22. Anaya B, García A. Cadena del mango en Santiago de Cuba: sondeo de demanda. Rev Econ Desarro. 2018;159(1):29-41.
).

A pesar de su importancia económica, enfrenta limitaciones fitosanitarias que reducen rendimientos hasta un 40 %, principalmente por ácaros fitófagos como Aceria mangifera Sayed y Oligonychus spp. (33. Atencio R, Herrera JA, Aguilera V, Vásquez A. Perspectiva general de los ácaros fitófagos en mango y marañón. Rev Cient Guacamaya. 2024;9(1):8-24. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890123
, 44. Cabrera RI, Smith JA, Díaz M. Impacto del cambio climático en ácaros fitófagos del Caribe. Exp Appl Acarol. 2022; 86(3):321-335. doi: https://doi.org/10.1007/s10493-022-00700-4
). Estos ácaros atacan hojas, yemas y otras estructuras, provocando clorosis y caída foliar (55. Mango.org. Pests and Diseases in Mango [Internet]. 2020 [cited 2025 Nov 13]. Available from: https://www.mango.org
). Estudios recientes indicaron que el cambio climático intensifica estas plagas, con aumentos del 15-20 % en densidades, durante períodos secos (44. Cabrera RI, Smith JA, Díaz M. Impacto del cambio climático en ácaros fitófagos del Caribe. Exp Appl Acarol. 2022; 86(3):321-335. doi: https://doi.org/10.1007/s10493-022-00700-4
, 66. Rueda-Ramírez D, Paz-Núñez Y, Vásquez C. Climate-driven shifts in mite abundance in tropical mango systems. Exp Appl Acarol. 2021;85(2):87-101. doi: https://doi.org/10.1007/s10493-021-00676-6
).

Aunque los ácaros depredadores como Phytoseiulus macropilis Banks y Agistemus sp. ofrecen alternativas ecológicas (33. Atencio R, Herrera JA, Aguilera V, Vásquez A. Perspectiva general de los ácaros fitófagos en mango y marañón. Rev Cient Guacamaya. 2024;9(1):8-24. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890123
), en Cuba solo existen tres estudios recientes sobre acarofauna en mango (33. Atencio R, Herrera JA, Aguilera V, Vásquez A. Perspectiva general de los ácaros fitófagos en mango y marañón. Rev Cient Guacamaya. 2024;9(1):8-24. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890123
, 77. de la Torre PE, Cuervo N. Actualización de la lista de ácaros (Arachnida: Acari) de Cuba. Rev Ibér Aracnol. 2019;34:102-118.
, 88. del Toro M, Duarte L, Caballero B, R Chico, H Rodriguez-Morell, L Cuellas-Yanes, et al. Primer informe de ácaros en Morus alba L. cultivar Gui Sang Yon 62 (morera) en Cuba. Rev. Proteccion Veg. 2019;34(1):1-4. http://opn.to/a/5CEgD
), ninguno en Artemisa, territorio que aporta el 35 % de la producción nacional (22. Anaya B, García A. Cadena del mango en Santiago de Cuba: sondeo de demanda. Rev Econ Desarro. 2018;159(1):29-41.
). El último estudio disponible en la región data de 2013 (99. de la Torre PE, Manchado LL. Clave taxonómica para Bdellidae de Cuba. Fitosanidad. 2013;17(2):83-85.
), sin abordar parámetros ecológicos clave como preferencia foliar o diversidad efectiva. Este vacío de información es crítico, pues el 62 % de la producción cubana de mango se concentra en occidente (22. Anaya B, García A. Cadena del mango en Santiago de Cuba: sondeo de demanda. Rev Econ Desarro. 2018;159(1):29-41.
).

Este trabajo presenta la primera caracterización ecológica integral de ácaros en mango en Artemisa, incorporando metodologías actualizadas (1010. Amrine JW, Stasny TA, Flechtmann CHW. Revised keys to world Genera of Eriophyoidea. West Bloomfield: Indira Publishing; 2003. 239 pp.
, 1111. Moraes GJ, Britto EPJ, Mineiro JL, Halliday RB, Laing J, McMurtry JA. Phytoseiidae Database [Internet]. 2022 [cited 2025 Nov 13]. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890456
), índices emergentes como ENS (1212. Jost L. Partitioning diversity into independent alpha and beta components. Oikos. 2007;116(12): 2124-2131.
) y análisis de asociación entre fitófagos y depredadores. Su objetivo central es determinar parámetros ecológicos de ácaros en mango para fundamentar programas de manejo integrado.

Materiales y Métodos

La investigación se desarrolló en plantaciones de mango cv. ‘Tommy Atkins’ ubicadas en la Finca “26 de Julio” (22°48'N, 82°46'W), perteneciente a la Unidad Básica de Producción Cooperativa (UBPC) “30 de Noviembre”, de la Empresa Cítricos Ceiba, en la provincia de Artemisa, Cuba. El estudio abarcó el período comprendido entre marzo de 2017 y octubre de 2019.

Se realizaron 15 muestreos en fases fenológicas clave: floración (marzo), fructificación temprana (junio), maduración (agosto - septiembre) y cosecha (octubre) (1313. Global Mango Research Alliance. Sustainable Pest Management in Organic Mango Systems. Rome. FAO. 2022.
). Se seleccionaron 12 plantas fijas, recolectando 4 hojas por planta (una por punto cardinal), totalizando 720 hojas.

Las hojas se recolectaron en bolsas de polietileno estériles (25 × 35 cm), con registro de georreferencia, y se trasladaron al laboratorio para su procesamiento. El conteo inicial de los ácaros se realizó bajo un microscopio estereoscópico Leica M125 (8 - 100×). Los especímenes adultos se montaron en láminas con medio de Hoyer y fueron sometidos a secado a 60°C durante 72 horas. La identificación taxonómica se efectuó mediante observación en microscopio óptico Leica® DM750 (1000×, con contraste de fases), utilizando criterios morfológicos específicos: longitud de quetas idiosomales para Eriophyidae, patrón de escleritos genitales para Tetranychidae y quetotaxia dorsal para Phytoseiidae.

Se emplearon claves taxonómicas especializadas para Eriophyidae y Tetranychidae (1010. Amrine JW, Stasny TA, Flechtmann CHW. Revised keys to world Genera of Eriophyoidea. West Bloomfield: Indira Publishing; 2003. 239 pp.
, 1414. Moraes GJ, Flechtmann CHW. Manual de Acarologia: Tetranychidae. Ribeirão Preto. Holos Editora. 2004. 180 pp.
), Phytoseiidae (1111. Moraes GJ, Britto EPJ, Mineiro JL, Halliday RB, Laing J, McMurtry JA. Phytoseiidae Database [Internet]. 2022 [cited 2025 Nov 13]. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890456
), Tarsonemidae (1515. Khan T, Babar T. Insect Pests of Mango: Identification, Biology, and Management Strategies. En: Syed Atif Hasan Naqvi, Shakeel Ahmad, Mukhtar Ahmed (Eds). Climate Change and Mango Production. 2025. Springer. 345-368 pp.
) y Bdellidae (1616. Tixier MS, Kreiter S, Douin M. Functional responses of Phytoseiulus macropilis to key mango pests. Biol Control. 2023; 185:105312. doi: https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2023.105312
).

Para la abundancia relativa (Ar) se empleó la fórmula:

Donde: Ar = Abundancia relativa (%); ni = Número de individuos de la especie i; N = Número total de individuos.

La frecuencia relativa (Fr) se determinó mediante la fórmula:

Donde: Fr = Frecuencia relativa de aparición de especies (%), Mi = Número total de muestreos con la especie i. Mt = Número total de muestreos. Se aplicó la escala de Masson y Bryssinck (1717. Damasia DM, Bambharolia RP, Kachhela HR. Bio-efficacy of insecticides against hopper and thrips in mango. Pestic Res J. 2025;37(1):75-79. doi: https://doi.org/10.5958/2249-524X.2025.00012.2
), que indica que una especie es Muy abundante si la Ar > 30, Abundante si 10 ≤ Ar ≤ 30 y Poco abundante si Ar < 10. Se empleó igual escala para clasificar las especies como muy frecuentes, frecuentes y poco frecuentes.

Se realizó la prueba de Wilcoxon (Mann-Whitney U) (α = 0,05) para muestras independientes (1818. Masson A, Bryssinck S. The structure and diversity of the animal communities in peat lands reeds warp. J Zool. 1974;179: 289-302.
), que precisó la preferencia por haz o envés de los ácaros fitófagos que resultaron muy frecuentes.

Se aplicó el Test de Pearson (1919. Conover WJ. Estadística práctica no paramétrica. Nueva York. John Wiley & Sons. 1999. 584 p.
), se tomaron los valores totales de cada grupo en cada momento de muestreo, durante todo el periodo de investigación y, el cual determinó la correlación entre los ácaros fitófagos y depredadores obtenidos en los muestreos. Coeficiente de Pearson (r) con prueba t (p < 0,05).

Se calcularon los índices de Shannon (2020. Shannon CE, Weaver W. The Mathematical Theory of Communication. Urbana. Univ Illinois Press; 1949.
), Simpson (2121. Simpson EH. Measurement of diversity. Nature. 1949;163:688. doi: https://doi.org/10.1038/163688a0
) y ENS (1212. Jost L. Partitioning diversity into independent alpha and beta components. Oikos. 2007;116(12): 2124-2131.
).

Diversidad de Shannon-Weaver (H):

H’ toma valores entre 0,5 y-5 siempre positivo, el valor ideal está entre 2 y 3, valores inferiores a 2 indican que hay baja diversidad, valores superiores a 3 denotan alta diversidad (2020. Shannon CE, Weaver W. The Mathematical Theory of Communication. Urbana. Univ Illinois Press; 1949.
).

Dominancia de Simpson D (2121. Simpson EH. Measurement of diversity. Nature. 1949;163:688. doi: https://doi.org/10.1038/163688a0
):

ENS (1212. Jost L. Partitioning diversity into independent alpha and beta components. Oikos. 2007;116(12): 2124-2131.
):

Los análisis se realizaron con el software InfoStat v2023 (2222. InfoStat [software]. Version 2023. Córdoba: Grupo InfoStat; 2023.
) y los gráficos se realizaron en Microsoft Excel 2020.

Resultados y Discusión

Se registraron 13 especies de ácaros agrupadas en nueve familias y tres órdenes, con predominio de Trombidiformes (80 % de las familias detectadas). La comunidad estuvo compuesta por nueve especies fitófagas (A. mangifera, Aceria kenyae (Keifer), Spinacus pagonis (Keifer), Tetranychus urticae (Koch), Oligonychus spp., Tarsonemus sp., Polyphagotarsonemus latus (Banks), Brevipalpus sp. y un acárido no identificado), tres depredadoras (Bdella sp., Agistemus sp. y P. macropilis) y una con hábitos alimentarios variados (Tydeus sp.) (Tabla 1). Este perfil coincide con estudios en Nayarit, México, donde Tetranychidae y Eriophyidae dominaron en plantaciones de mango convencional (55. Mango.org. Pests and Diseases in Mango [Internet]. 2020 [cited 2025 Nov 13]. Available from: https://www.mango.org
). La presencia de P. macropilis es particularmente relevante, pues estudios recientes lo validan como agente de control de S. pagonis en el Caribe (33. Atencio R, Herrera JA, Aguilera V, Vásquez A. Perspectiva general de los ácaros fitófagos en mango y marañón. Rev Cient Guacamaya. 2024;9(1):8-24. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890123
, 2323. Castro LM, Herrera JA, Díaz M. Pyrethroid resistance in Caribbean mite pests: para gene mutations and management implications. Sci Rep. 2024;14:56789. doi: https://doi.org/10.1038/s41598-024-56789-6
).

S. pagonis mostró abundancia muy alta y frecuencia elevada durante los tres años (Tabla 2). Estos valores superan informes previos en Cuba y se asocia a resistencia a acaricidas como cipermetrina (33. Atencio R, Herrera JA, Aguilera V, Vásquez A. Perspectiva general de los ácaros fitófagos en mango y marañón. Rev Cient Guacamaya. 2024;9(1):8-24. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890123
). Estudios recientes en agroecosistemas caribeños, confirmaron que este eriófido desarrolla mutaciones en el gen para (sustitución G314S), reduciendo la eficacia de piretroides como la cipermetrina en un 40 - 60 % (2424. FAO. Manual de liberación de depredadores en cultivos tropicales. Rome: FAO; 2021.
). Esto explica su persistencia en sistemas convencionales. En La Habana, se informaron valores de LC₅₀ hasta 15 veces mayores en poblaciones de referencia (33. Atencio R, Herrera JA, Aguilera V, Vásquez A. Perspectiva general de los ácaros fitófagos en mango y marañón. Rev Cient Guacamaya. 2024;9(1):8-24. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890123
). La transición a acaricidas botánicos (ej. jabones potásicos) o inhibidores de crecimiento (ej. etoxazol) es urgente para romper este ciclo (55. Mango.org. Pests and Diseases in Mango [Internet]. 2020 [cited 2025 Nov 13]. Available from: https://www.mango.org
, 2424. FAO. Manual de liberación de depredadores en cultivos tropicales. Rome: FAO; 2021.
).

Por su parte, A. mangifera y A. kenyae mantuvieron alta frecuencia (60 %) pero abundancia variable (Tabla 2), esta fluctuación interanual en abundancia sugiere fuerte modulación climática. Durante períodos secos (precipitación < 50 mm.mes^-1), se observaron incrementos del 18 - 22 % en sus densidades, patrón validado por modelos predictivos para eriófidos del mango (66. Rueda-Ramírez D, Paz-Núñez Y, Vásquez C. Climate-driven shifts in mite abundance in tropical mango systems. Exp Appl Acarol. 2021;85(2):87-101. doi: https://doi.org/10.1007/s10493-021-00676-6
). Estos ácaros aprovechan el estrés hídrico del hospedero, que reduce la producción de metabolitos defensivos (ej. mangiferina), facilitando la colonización (66. Rueda-Ramírez D, Paz-Núñez Y, Vásquez C. Climate-driven shifts in mite abundance in tropical mango systems. Exp Appl Acarol. 2021;85(2):87-101. doi: https://doi.org/10.1007/s10493-021-00676-6
, 2525. Tixier MS, Kreiter S, Ferrero M. Climate-resilient biocontrol strategies in tropical fruit systems. Agron Sustain Dev. 2025; 45(2):112. doi: https://doi.org/10.1007/s13593-025-00987-1
). Proyecciones bajo escenarios RCP 6.0 indicaron que eventos secos aumentarán un 30 % en Artemisa para 2040 (66. Rueda-Ramírez D, Paz-Núñez Y, Vásquez C. Climate-driven shifts in mite abundance in tropical mango systems. Exp Appl Acarol. 2021;85(2):87-101. doi: https://doi.org/10.1007/s10493-021-00676-6
), lo que exigirá ajustes en fechas de monitoreo y liberación de los depredadores.

El acárido no identificado mostró presencia constante en el envés foliar (100 % de frecuencia en 2017 y 2019) (Tabla 2), requiriendo estudios taxonómicos más profundos.

Los ácaros fitófagos mostraron preferencia significativa por el envés foliar, especialmente el acárido no identificado (p = 0,0015) y S. pagonis (p = 0,0513) (Tabla 3). Esta conducta coincide con estudios en Colombia y Cuba (88. del Toro M, Duarte L, Caballero B, R Chico, H Rodriguez-Morell, L Cuellas-Yanes, et al. Primer informe de ácaros en Morus alba L. cultivar Gui Sang Yon 62 (morera) en Cuba. Rev. Proteccion Veg. 2019;34(1):1-4. http://opn.to/a/5CEgD
, 1111. Moraes GJ, Britto EPJ, Mineiro JL, Halliday RB, Laing J, McMurtry JA. Phytoseiidae Database [Internet]. 2022 [cited 2025 Nov 13]. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890456
), donde el envés ofrece protección contra depredadores y radiación UV. La distribución en haz fue mínima (< 3 individuos.hoja^-1 en todas las especies), lo que debe considerarse en programas de monitoreo.

La correlación fue significativa entre fitófagos y depredadores (r= 0,57; p = 0,03) (Fig. 1) lo que valida la dependencia funcional entre grupos. La sincronización es crucial, pues los picos poblacionales en agosto-septiembre coinciden con lluvias intensas (r = 0,82 con precipitación) (66. Rueda-Ramírez D, Paz-Núñez Y, Vásquez C. Climate-driven shifts in mite abundance in tropical mango systems. Exp Appl Acarol. 2021;85(2):87-101. doi: https://doi.org/10.1007/s10493-021-00676-6
), período ideal para liberaciones aumentativas.

Los índices calculados, no presentaron valores significativamente diferentes (p > 0,05) para los años estudiados (Tabla 4). La riqueza de especie para este grupo de ácaros fue la misma exceptuando el año 2017, donde fue menor con respecto a los dos años restantes. Estos mostraron baja diversidad (Shannon = 1,30 - 1,72) pero se encuentran dentro del rango establecido para una correcta diversidad (entre 1 y 5) (2626. Rodríguez M, D Hernández, M Borges, JL Rodríguez. Biodiversidad de artrópodos benéficos en una colección de anonáceas en Artemisa, Cuba. Fitosanidad. 2016. 20(1).
) y baja dominancia (Simpson = 0,20 - 0,37), inferiores a sistemas orgánicos (33. Atencio R, Herrera JA, Aguilera V, Vásquez A. Perspectiva general de los ácaros fitófagos en mango y marañón. Rev Cient Guacamaya. 2024;9(1):8-24. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890123
). Esto se atribuye al uso de productos químicos (reduce depredadores en 40 %), ausencia de cobertura vegetal y monocultivo sin diversificación (33. Atencio R, Herrera JA, Aguilera V, Vásquez A. Perspectiva general de los ácaros fitófagos en mango y marañón. Rev Cient Guacamaya. 2024;9(1):8-24. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890123
, 2424. FAO. Manual de liberación de depredadores en cultivos tropicales. Rome: FAO; 2021.
).

La ligera mejora en 2019 (ENS = 5,59) coincidió con reducción documentada de plaguicidas en la finca, sugiriendo resiliencia del sistema bajo manejo sostenible.

Se recomienda un control focalizado de S. pagonis, realizando un monitoreo semanal de envés foliar en agosto-septiembre (período crítico). Potenciar P. macropilis haciendo liberaciones aumentativas en junio (5 ind/planta) previo a picos de plaga (66. Rueda-Ramírez D, Paz-Núñez Y, Vásquez C. Climate-driven shifts in mite abundance in tropical mango systems. Exp Appl Acarol. 2021;85(2):87-101. doi: https://doi.org/10.1007/s10493-021-00676-6
, 2323. Castro LM, Herrera JA, Díaz M. Pyrethroid resistance in Caribbean mite pests: para gene mutations and management implications. Sci Rep. 2024;14:56789. doi: https://doi.org/10.1038/s41598-024-56789-6
).

Hacer una transición agroecológica, con tácticas como sustituir los químicos por jabones potásicos (55. Mango.org. Pests and Diseases in Mango [Internet]. 2020 [cited 2025 Nov 13]. Available from: https://www.mango.org
, 2424. FAO. Manual de liberación de depredadores en cultivos tropicales. Rome: FAO; 2021.
), introducir barreras de Crotalaria spp. para incrementar depredadores (33. Atencio R, Herrera JA, Aguilera V, Vásquez A. Perspectiva general de los ácaros fitófagos en mango y marañón. Rev Cient Guacamaya. 2024;9(1):8-24. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890123
, 2323. Castro LM, Herrera JA, Díaz M. Pyrethroid resistance in Caribbean mite pests: para gene mutations and management implications. Sci Rep. 2024;14:56789. doi: https://doi.org/10.1038/s41598-024-56789-6
) y mantener cobertura vegetal con Arachis pintoi Krapov. & W.C.Gregory (66. Rueda-Ramírez D, Paz-Núñez Y, Vásquez C. Climate-driven shifts in mite abundance in tropical mango systems. Exp Appl Acarol. 2021;85(2):87-101. doi: https://doi.org/10.1007/s10493-021-00676-6
, 2525. Tixier MS, Kreiter S, Ferrero M. Climate-resilient biocontrol strategies in tropical fruit systems. Agron Sustain Dev. 2025; 45(2):112. doi: https://doi.org/10.1007/s13593-025-00987-1
). Estas prácticas podrían reducir infestaciones hasta en un 70 %, según modelos en fincas cubanas (33. Atencio R, Herrera JA, Aguilera V, Vásquez A. Perspectiva general de los ácaros fitófagos en mango y marañón. Rev Cient Guacamaya. 2024;9(1):8-24. doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.7890123
), mejorando biodiversidad (ENS > 6,0) y sostenibilidad.

Conclusiones

Bibliografía